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紫外吸收法与Folin——酚比色法测定蛋白质含量相比,有何优缺点
发布于2022-01-13 20:11:50
4
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网友回答
2022-01-13
紫外吸收
法是以含有
苯环
的氨基酸为基础测量的,OD280值,各种蛋白含有的苯环的氨基酸数量不一定,所以只是大致估计。 Lowry Protein Assay Kit
福林酚
蛋白浓度测定
试剂盒
产品说明: 在碱性条件下,蛋白质与铜作用生成蛋白质-铜
络合物
。此络合物将
磷钼酸
-
磷钨酸
试剂(Folin 试剂)还原,产生深蓝色(磷
钼蓝
和磷钨蓝混合物),这种深蓝色的复合物在745-750nm处有最大吸收峰,颜色深浅与
蛋白质含量
成正比。此法操作简便,灵敏度比
双缩脲法
高100 倍。 产品特点: 1.不同蛋白质分子之间的
变异系数
教小; 2.在40分钟内可以完成蛋白质定量过程; 3.有
酶标板
法和
分光光度法
两种定量程序 4.定量范围为5-100ul/ML蛋白质。 编号 包装 价格 产地 SK4031 1000 Assays 150 生工 SK4033 1000 Assays +10Microplates 230 生工 Stable Lowry Protein Assay Kit 稳定型
Lowry法
蛋白浓度测定试剂盒 产品说明: 碱性条件下,蛋白质与铜作用生成蛋白质-铜络合物。此络合物将磷钼酸-磷钨酸试剂(Folin 试剂)还原,产生深蓝色(磷钼蓝和磷钨蓝混合物),颜色深浅与蛋白质含量成正比。此法灵敏度比双缩脲法高100 倍,定量范围为5-100μg/ml蛋白质。经典的Lowry法的主要缺点是由Reagent A和B按照一定比例配置成的碱性
铜试剂
(Reagent C)不稳定,需要当天配制,经典的Lowry法产生的颜色稳定性也不高,在反应20-120min内变化9.2%。本试剂盒采用一种改进的即用型稳定的碱性铜试剂代替经典Lowry法的Reagent A;B;C,使得实验操作更加的简单便捷,反应产生的蓝色复合物能够稳定存在至少2小时。而且该稳定型碱性铜试剂在4度,避光的条件下可稳定保存至少6个月以上,实验制得的
标准曲线
与经典方法基本吻合。用酶标板使用1000次或分光光度法100次。 产品特点: 1.即用型而且稳定的碱性铜试剂,使用更加方便; 2.有
离心管
法和酶标板法两种定量方法; 3.蛋白质浓度的线性范围在5-100μg/ml; 4.高的灵敏性保证了低蛋白质浓度样品的精确定量。 编号 包装 价格 产地 SK4051 1000 Assays 260 生工 Modified Lowry Protein Assay Kit 改良型Lowry法蛋白浓度测定试剂盒 产品说明: 在碱性条件下,蛋白质与铜作用生成蛋白质-铜络合物。此络合物将磷钼酸-磷钨酸试剂(Folin 试剂)还原,产生深蓝色(磷钼蓝和磷钨蓝混合物),颜色深浅与蛋白质含量成正比。此法操作简便,灵敏度比双缩脲法高100 倍,定量范围为5-100μg/ml蛋白质。通过特殊的沉淀试剂可以完全去除蛋白质样品中的大部分干扰物质,而蛋白质的损失几乎为零.保证了结果的准确性和提高了定量的灵敏度。 产品特点: 1.特殊的沉淀试剂去除蛋白质样品中干扰物质,比常规lowry有更好的
线性关系
,结果更准确; 2.不同蛋白质分子之间的变异系数教小; 3.有酶标板法和分光光度法两种定量程序; 4.定量范围为5-100μg/ml蛋白质。 编号 包装 价格 产地 SK4041 1000 Assays 180 生工
网友回答
2022-01-13
首先,紫外吸收法容易被核酸干扰,而且测定混合有机成分时,极不准确。但操作相当简单快捷。而Folin酚比色法虽然步骤甚多,但干扰小,测得的结果的可靠性比较好。Folin-酚试剂法包括两步反应:第一步是在碱性条件下,蛋白质与铜作用生成蛋白质-铜络合物;第二步是此络合物将磷钼酸-磷钨酸试剂(Folin 试剂)还原,产生深蓝色(磷钼蓝和磷钨蓝混合物),颜色深浅与蛋白质含量成正比。此法操作简便,灵敏度比双缩脲法高100 倍,定量范围为5~100μg 蛋白质。Folin 试剂显色反应由酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸引起,因此样品中若含有酚类、柠檬酸和巯基化合物均有干扰作用。此外,不同蛋白质因酪氨酸、色氨酸含量不同而使显色强度稍有不同。 其次,对于folin酚法,现在有酶标板批量测值,比较方便。 再次,若是条件允许,可以用bradford法测定蛋白浓度,这是目前,据说最灵敏的测定方法;要是条件不允许,folin酚也挺不错的,本人以前一直用该法测蛋白浓度,对于紫外风光光度法测蛋白浓度,不推荐...即使用nano测...
网友回答
2022-01-13
根据蛋白质与染料相结合的原理设计的。这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点,因而正在得到广泛的应用。这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。 考马斯亮兰g-250染料,在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料的最大吸收峰的位置(lmax),由465nm变为595nm,溶液的颜色也由棕黑色变为兰色。经研究认为,染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸残基相结合。 在595nm下测定的吸光度值a595,与蛋白质浓度成正比。 bradford法的突出优点是: (1)灵敏度高,据估计比lowry法约高四倍,其最低蛋白质检测量可达1mg。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大,蛋白质-染料复合物有更高的消光系数,因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比lowry法要大的多。 (2)测定快速、简便,只需加一种试剂。完成一个样品的测定,只需要5分钟左右。由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20分钟之间,颜色的稳定性最好。因而完全不用像lowry法那样费时和严格地控制时间。 (3)干扰物质少。如干扰lowry法的k、na 、mg2 离子、tris缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、edta等均不干扰此测定法。 此法的缺点是: (1)由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差,在制作 标准曲线时通常选用 g—球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。 (2)仍有一些物质干扰此法的测定,主要的干扰物质有:去污剂、 triton x-100、十二烷基硫酸钠(sds)和0.1n的naoh。(如同0.1n的酸干扰lowary法一样)。(3)标准曲线也有轻微的非线性,因而不能用beer定律进行计算,而只能用标准曲线来测定未知蛋白质的浓度。 (二)试剂与器材 1. 试剂: (1)标准蛋白质溶液,用 g—球蛋白或牛血清清蛋白(bsa),配制成1.0mg/ml和0.1mg/ml的标准蛋白质溶液。 (2)考马斯亮兰g—250染料试剂:称100mg考马斯亮兰g—250,溶于50ml 95%的乙醇后,再加入120ml 85%的磷酸,用水稀释至1升。 2. 器材: (1)可见光分光光度计 (2)旋涡混合器 (3)试管16支 (三)操作方法 1. 标准方法 (1)取16支试管,1支作空白,3支留作未知样品,其余试管分为两组按表中顺序,分别加入样品、水和试剂,即用1.0mg/ml的标准蛋白质溶液给各试管分别加入:0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml,然后用无离子水补充到0.1ml。最后各试管中分别加入5.0ml考马斯亮兰g—250试剂,每加完一管,立即在旋涡混合器上混合(注意不要太剧烈,以免产生大量气泡而难于消除)。未知样品的加样量见下表中的第8、9、10管。 (2)加完试剂2~5分钟后,即可开始用比色皿,在分光光度计上测定各样品在595nm处的光吸收值a595,空白对照为第1号试管,即0.1mlh2o加5.0mlg—250试剂。 注意:不可使用石英比色皿(因不易洗去染色),可用塑料或玻璃比色皿,使用后立即用少量95%的乙醇荡洗,以洗去染色。塑料比色皿决不可用乙醇或丙酮长时间浸泡。 (3)用标准蛋白质量(mg)为横座标,用吸光度值a595为纵座标,作图,即得到一条标准曲线。由此标准曲线,根据测出的未知样品的a595值,即可查出未知样品的蛋白质含量。 0.5mg牛血清蛋白/ml溶液的a595约为0.50。 2. 微量法 当样品中蛋白质浓度较稀时(10-100mg/ml),可将取样量(包括补加的水)加大到0.5ml或1.0ml, 空白对照则分别为0.5ml或1.0ml h2o, 考马斯亮蓝g-250试剂仍加5.0ml, 同时作相应的标准曲线,测定595nm的光吸收值。0.05mg牛血清蛋白/ml溶液的a595约为0.29。
网友回答
2022-01-13
紫外吸收法的优点就是 节约材料并且反应更彻底 绿色环保 实验结果也很精确 便于观察 Folin现在基本上被淘汰了!
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除了folin酚法,还有什么方法可以测定蛋白质含量,其原理以及优缺点是什么
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